CAR-T免疫疗法用于肿瘤治疗研究进展

陈明月,张 伟

(河南省人民医院,河南 郑州 450000)

摘要近年来肿瘤发病率呈上升趋势,嵌合抗原受体T细胞(CAR-T)作为一种新型的免疫治疗方法,随着科技的发展和生物技术的不断进步,在血液瘤的治疗中大放异彩,让人们看到了癌症治愈的胜利曙光,开启了CAR-T研究的热潮,本文就CAR-T疗法近年的研究进展作一综述。

关键词CAR-T;免疫治疗;血液瘤;实体瘤

随着生活节奏加快,饮食作息不规律,导致内分泌紊乱、免疫系统低下,再加上长期处于电磁辐射、空气污染的环境中,饮用的食物中农药、激素残留,各种添加剂等,使癌症发病率逐年上升,并呈现年轻化趋势。目前早期的癌症诊断技术并不成熟,90%的早期患者并没有明显症状,诊断结果只能作为参考,使用肿瘤的金标准病理学检验确诊时,多数已属于癌症中晚期。此时使用手术、放疗、化疗等常规治疗手段,已不能达到根治效果,并给患者带来巨大痛苦,后期复发后常规手段已无能为力,亟待新的治疗手段。

目前肿瘤的辅助治疗包括免疫治疗、中医治疗、物理治疗等,免疫治疗是肿瘤辅助治疗的重要手段,有免疫调节剂、DC瘤苗、免疫检查点阻断治疗和过继性免疫治疗等,这些治疗手段能在一定程度上缓解病人痛苦、提高其生活质量并延长生命,但并不能完全阻止肿瘤的复发。2010年,嵌合抗原受体T细胞(CAR-T)用于治疗一名发病多年的白血病患者,并得到了完全缓解的效果,让人们看到了癌症治疗的曙光。2017年8月30日,FDA宣布批准诺华CAR-T细胞疗法CTL019正式上市,让研究者们热血沸腾,开启了CAR-T疗法的新局面。本文就CAR-T疗法近年的研究进展作一综述。

1 CAR-T的结构

CAR-T的结构按照所处位置分为胞外区、跨膜区、胞内区三部分。胞外区又可以分为胞外铰链区(促进抗原受体与肿瘤抗原的结合)和肿瘤相关抗原结合区(scFv,用于识别并结合肿瘤特异性抗原),选择不同的肿瘤标志物作为抗原以杀伤不同的肿瘤细胞;跨膜区起到固定CAR作用;胞内区分为T细胞活化区(提供T细胞活化的第一信号,激活T细胞的增殖信号通路)和共刺激区(提供T细胞活化的第二信号,维持T细胞的生存时间),不同信号分子的选择对构建成的CAR-T细胞增殖分化、活性、因子分泌起到关键性作用。

2 CAR-T的发展历程

随着人类对免疫和基因技术研究的不断深入,研究者发现,人体每天都有很多突变的细胞会转变为肿瘤细胞,正常情况下,人类的免疫系统通过免疫监视功能可以很容易识别并清除肿瘤细胞,维持人体正常的生理功能,但当机体免疫低下时,肿瘤细胞就会发生逃逸,继而发生恶性变演化为肿瘤。研究者通过研究T细胞对肿瘤细胞的杀伤机制发现,T细胞对肿瘤细胞的杀伤要经过肿瘤抗原的摄取加工提呈,和细胞表面的MHC分子识别进行,该过程不仅效率低,而且肿瘤可以通过低免疫原性、免疫环境抑制等手段发生逃逸,达不到完全清除的效果。研究者开始通过对T细胞进行改造来达到完全清除肿瘤的目的。

1989年,Zelig Eshhar等设计了CAR-T的前体模型——第一代CAR-T细胞,这种T细胞表面只表达一种嵌合型受体CD3ζ链或免疫球蛋白FcεRI受体γ链,能特异性地识别相关肿瘤细胞,但这种转导后的细胞持久性很差,很快就凋亡了[1-3]。虽然第一代CAR-T没有达到理想的作用效果,但却为后期研究者指点了方向,它让T细胞不再局限于MHC识别的限制性,而是像抗体识别抗原一样快速准确。

为了解决第一代CAR-T持续性的问题,1998年,Finney等[4]在胞内区加入了一个共刺激区(CD28分子),促进了细胞的增殖和IL-2的分泌,之后不断有类似的报道[5-7]。这种只加入一种共刺激信号分子的CAR-T被称为第二代CAR-T细胞。为了进一步增强CAR-T的杀伤效果、持久性和细胞间的促进作用,第三代CAR-T细胞在第二代的CAR-T细胞的基础上多加入一个共刺激分子。

随着第二代、第三代CAR-T细胞试验的深入和临床方面的应用,出现了一系列问题,如肿瘤溶解综合征(TLS)、B细胞再生性障碍、脱靶效应和细胞因子释放综合征(CRS)等,另外肿瘤周围的免疫抑制微环境不利于肿瘤细胞的杀伤,为了提高CAR-T细胞的安全性和杀伤活性,第四代CAR-T细胞应运而生。

3 CAR-T的研究进展

3.1 CAR-T细胞在血液瘤中的研究 自2011年June团队[8]报道了使用CD19-CAR-T成功治疗3例难治的慢性淋巴细胞白血病以来,陆续有成功的案例报道,引发了CAR-T的研究热潮。Lee等[9]报道了靶向CD19分子的CAR-T剂量以1×106/kg或3×106/kg治疗慢性、急性淋巴细胞白血病和B细胞淋巴瘤患者对毒性反应和可行性进行评估,治疗过程出现发热、低血钾、嗜中性白细胞减少和细胞因子释放综合征,结果显示最大耐受剂量为1×106/kg,靶向CD19分子的CAR-T治疗耐药性B细胞急性淋巴瘤是可行的、安全的,所有毒性反应均是可逆的,并没有发现长时间的B细胞发育不良。Rodgers等[10]报道了在CAR-T的抗原选择域插入一个特异性开关基因,从而使CAR-T的杀伤作用可控,并在动物体内通过靶向CD20的CAR-T治疗B细胞恶性肿瘤得到验证,减轻了毒性反应,研究表明该思路同样适用于其他血液瘤和实体瘤。

目前诺华公司针对治疗罹患B细胞前体急性淋巴性白血病的CAR-T细胞CTL019已经上市,会让不少患者受益,但是仍有不少患者因白血病复发和难治而去世,这就需要研究者们研发更为有效的CAR-T细胞。Zah等[11]报道了以CD19和CD20为双向靶点设计出新型CAR-T,能同时进行杀伤,提高了杀伤效果,降低复发的可能性。目前治疗B细胞恶性肿瘤的CAR-T多以CD19和CD20为靶向分子,另外也有以CD22、CD23、CD38等为靶向分子的报道[12-14],为血液瘤的治疗提供了更多的选择。

3.2 CAR-T细胞在实体瘤中的研究 在血液瘤中,CAR-T的研究结果喜人,然而在实体瘤中的进展却不那么顺利,出现了更多的毒副反应,如脱靶效应、细胞因子风暴等,主要在于血液瘤抗原是同质的或大部分都表达,实体瘤的靶抗原存在异质性,发生在不同部位的肿瘤可能靶向抗原不同,另外靶向抗原的特异性不强,同样的抗原信息在机体的其他正常组织中也能表达,从靶向抗原的选择上就存在一定的难度。面对难治的实体瘤研究者们从多方面去寻找疗效和安全的平衡。

Heczey等[15]报道了以GD2 为靶点的三代CAR-T细胞治疗神经胶质瘤,试验分为3个组:1组(CAR-T单独作用组)、2组(以环磷酰胺/氟达拉滨辅助CAR-T组)、3组(以环磷酰胺/氟达拉滨和PD-1抑制剂辅助CAR-T组),结果显示,回输皆安全,无剂量限值毒性,6周时检测发现1组中仍有CAR-T细胞存在,2组中出现淋巴细胞缺失和IL-15水平上升,3组中没有检测到异常反应。Whilding等[16]报道了以αvβ6整合素为靶点选择高表达αvβ6的小鼠治疗卵巢、乳腺和胰腺类肿瘤以研究可能出现的症状,结果显示,注射超高剂量的CAR-T细胞后,毒性反应是轻度和可逆的,这为以αvβ6整合素为靶点的实体瘤治疗提供了临床参考。

实体瘤治疗的难点在于抗原特异性标志物难找,另外主要是肿瘤低免疫原性和肿瘤免疫抑制微环境,直接影响到CAR-T作用效果,通过改变肿瘤周围的微环境,为CAR-T的杀伤效果提供新的思路。Pegram等[17]报道了在CAR-T上整合能分泌IL-12的新型CAR-T细胞,不仅能增强T细胞毒性和细胞因子分泌,还能起到抗Treg细胞的免疫抑制作用。John等[18]报道了CAR-T细胞联合抗PD-1抗体一起使用,可提高抗肿瘤效果。Suarez等[19]报道了在靶向CAIX的CAR-T中加入能分泌PD-L1抗体的区域治疗转移性肾透明细胞癌,结果显示,肿瘤细胞大部分消失。Tanoue等[20]报道了多种人实体瘤细胞异种移植情况下,采用CAR-T联合PD-L1单抗进行杀伤,均能获得更好的杀伤效果,验证了能表达PD-L1单抗的CAR-T具有更好的实体瘤杀伤效果。

4 结 语

CAR-T疗法是目前众多癌症治疗方法中被认为最有效、最有可能治愈癌症的方法,从目前CAR-T在血液瘤中的诸多案例可以看出,治愈癌症前途是光明的,但前方道路依旧漫长曲折,实体瘤的复杂难治至今仍没有成功治愈的案例,但研究者们前仆后继的付出,已为CAR-T疗法积累了大量的经验,势必成为攻克癌症的坚实基础。安全问题仍是需要研究者考虑的重中之重,CAR-T治疗中严重的毒副反应给不同的患者带来不一样的痛苦,治疗方案应因人而异;目前构建CAR-T所用的转染方式仍多以病毒为主,尽管没有相关事故报道,但仍需要我们考虑更为安全便捷的转染方式;另外,随着CAR-T技术的成熟,CAR-T细胞在患者体内存在的时间更长,这些存在的细胞是否会引起人体正常的免疫系统紊乱,也需要进一步的关注。

参考文献

[1]GROSS G, WAKS T, ESHHAR Z. Expression of immunoglobulin-T-cell receptor chimeric molecules as functional receptors with antibody-type specificity[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 1989, 86(24): 10024-10028.

[2]HEUSER C, HOMBACH A, LÖSCH C, et al. T-cell activation by recombinant immuno-receptors: impact of the intracellular signalling domain on the stability of receptor expression and antigen-specific activation of grafted T cells[J]. Gene Ther, 2003, 10(17): 1408-1419.

[3]ZHAO Y B, WANG Q J, YANG S C, et al. A Herceptin-based chimeric antigen receptor with modified signaling domains leads to enhanced survival of transduced T lymphocytes and antitumor activity[J]. Journal of Immunology, 2009, 183(9): 5563-5574.

[4]FINNEY H M, LAWSON A D, BEBBINGTON C R, et al. Chimeric receptors providing both primary and costimulatory signaling in T cells from a single gene product[J]. J Immunol, 1998, 161(6): 2791-2797.

[5]MILONE M C, FISH J D, CARPENITO C, et al. Chimeric receptors containing CD137 signal transduction domains mediate enhanced survival of T cells and increased antileukemic efficacy in vivo[J]. Mol Ther, 2009, 17(8): 1453-1464.

[6]JENSEN M C, RIDDELL S R. Design and implementation of adoptive therapy with chimeric antigen receptor-modified T cells[J]. Immunol Rev, 2014, 257(1, SI): 127-144.

[7]PARK T S, ROSENBERG S A, MORGAN R A. Treating cancer with genetically engineered T cells[J]. Trends Biotechnol, 2011, 29(11): 550-557.

[8]PORTER D L, LEVINE B L, KALOS M, et al. Chimeric antigen receptor-modified T cells in chronic lymphoid leukemia[J]. N Engl J Med, 2011, 365(8): 725-733.

[9]LEE D W, KOCHENDERFER J N, STETLER-STEVENSON M, et al. T cells expressing CD19 chimeric antigen receptors for acute lymphoblastic leukaemia in children and young adults: a phase 1 dose-escalation trial[J]. Lancet, 2015, 385(9967): 517-528.

[10]RODGERS D T, MAZAGOVA M, HAMPTON E N, et al. Switch-mediated activation and retargeting of CAR-T cells for B-cell malignancies[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2016, 113(4): E459-E468.

[11]ZAH E, LIN M Y, SILVA-BENEDICT A, et al. T cells expressing CD19/CD20 bi-specific chimeric antigen receptors prevent antigen escape by malignant B cells[J]. Cancer Immunology Research, 2016, 4(6): 498-508.

[12]HASO W, LEE DW, SHAH N N, et al. Anti-CD22-chimeric antigen receptors targeting B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia[J]. Blood, 2013, 121(7): 1165-1174.

[13]GIORDANO ATTIANESE G M, MARIN V, HOYOS V, et al. In vitro and in vivo model of a novel immunotherapy approach for chronic lymphocytic leukemia by anti-CD23 chimeric antigen receptor[J]. Blood,2011,117:4736-4745.

[14]MIHARA K, YANAGIHARA K, TAKIGAHIRA M A, et al. Synergistic and persistent effect of T-cell immunotherapy with anti-CD19 or anti-CD38 chimeric receptor in conjunction with rituximab on B-cell non-Hodgkin lymphoma[J]. Br J Haematol, 2010, 151(1): 37-46.

[15]HECZEY A, LOUIS C U, SAVOLDO B, et al. CAR T cells administered in combination with lymphodepletion and PD-1 inhibition to patients with neuroblastoma[J]. Molecular Therapy, 2017, 25(9): 2214-2224.

[16]WHILDING L M, PARENTE-PEREIRA A C, ZABINSKI T A, et al. Targeting of aberrant alpha v beta 6 integrin expression in solid tumors using chimeric antigen receptor-engineered T cells[J]. Molecular Therapy, 2017, 25(1): 259-273.

[17]PEGRAM H J, LEE J C, HAYMAN E G, et al. Tumor-targeted T cells modified to secrete IL-12 eradicate systemic tumors without need for prior conditioning[J]. Blood, 2012, 119(18): 4133-4141.

[18]JOHN L B, DEVAUD C, DUONG C P, et al. Anti-PD-1 antibody therapy potently enhances the eradication of established tumors by gene-modified T cells[J]. Clinical Cancer Research, 2013, 19(20): 5636-5646.

[19]SUAREZ E R, CHANG D K, SUN J S, et al. Chimeric antigen receptor T cells secreting anti-PD-L1 antibodies more effectively regress renal cell carcinoma in a humanized mouse model[J]. Oncotarget, 2016, 7(23): 34341-34355.

[20]TANOUE K, SHAW A R, WATANABE N A, et al. Armed oncolytic adenovirus-expressing PD-L1 mini-body enhances antitumor effects of chimeric antigen receptor T cells in solid tumors[J]. Cancer Res, 2017, 77(8): 2040-2051.

中图分类号R730.51

【文献标识码】A

DOI:10.11851/j.issn.1673-1557.2018.04.031

优先数字出版地址http://kns.cnki.net/kcms/detail/51.1688.R.20180723.1555.048.html

通信作者:张伟,zhangwei9001@126.com

(收稿日期:2017-10-17)